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技術文章首頁 > 技術文章 lip2000脂質體2000的兩種轉染方法
  • lip2000脂質體2000的兩種轉染方法
  • 點擊次數:6035 更新時間:2016-02-24
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  •    lip2000脂質體2000適用于把DNA轉染入懸浮或貼壁培養細胞中,是目前條件下zui方便的轉染方法之一。轉染率高,優于磷酸鈣法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA轉染到各種細胞。

      用lip2000脂質體2000進行轉染時,首先需要優化轉染條件,應找出該批LR對轉染某一特定細胞適合的用量、作用時間等,對每批LR都要做。先要固定一個DNA的量和DNA/LR混合物與細胞相互作用的時間,DNA可從1-5ug和孵育時間6h,開始,按這兩個參數繪出相應LR需用量的曲線,再選用LR和DNA兩者*的劑量,確定出轉染時間。因LR對細胞有一定的毒性,轉染時間以不超過24h為宜。COS-7、BHK、NIH-3T3、Hela和Jurkat等任何一種細胞均可作為受體細胞。

      lip2000脂質體2000的轉染方法常見有兩種,具體如下:

      一、快速lip2000脂質體2000轉染法操作步驟

      (1)將細胞以5 x 10^5個/孔接種于6孔板中培養24h,使其達到50%-60%板底面積。在試管中配制DNA-脂質體復合物。

      a、在1ml無血清DMEM中稀釋PSV1-neo質粒DNA或供體DNA。

      b、旋轉1s,再加入脂質體懸液,旋轉。

      c、室溫下放置5-10min,使DNA結合在脂質體上。

      (2)棄去細胞中的舊液,用1ml無血清DMEM洗細胞1次后棄去,向每孔中直接加入1mlDNA-脂質體復合物,37℃培養3-5天。

      (3)再于每孔中加入含20%胎牛血清的DMEM,繼續培養14-24h。

      (4)吸出DMEM-DNA-脂質體混合物加入新鮮含10%胎牛血清的DMEM,2ml/孔,再培養24-48h。

      (5)用細胞刮或消化法收集細胞,以備分析鑒定。

      二、穩定的lip2000脂質體2000轉染法

      接種細胞同前述,細胞長至50%板底面積可用于轉染。

      DNA-脂質體復合物制備轉染細胞同前。

      在每孔中加入1ml含20%胎牛血清的DMEM,37℃培養48h。

      吸出DMEM,用G418選擇性培養基稀釋細胞,使細胞生長一定時間,篩選轉染克隆,方法參照細胞克隆篩選法進行。

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